1、前言
1.1適用范圍
本指南介紹百邁客動物類組織&核酸樣品的送樣要求及制備方法。采集送樣前請詳細閱讀。信息單中樣本名稱、組織部位必須與實物相符,避免因信息單與實物不符導(dǎo)致反復(fù)核對,影響樣本質(zhì)量、錄入周期,導(dǎo)致提取核酸質(zhì)量不滿足建庫測序要求,實驗周期過長等
1.2提取風險提示
核酸提取質(zhì)量與物種及組織部位、樣本制備、樣本交接、提取方法與操作、以及環(huán)境等因素息息相關(guān),尤其是三代超長提取對樣的要求更高。組織提取時可能受到上下游處理操作的影響,因此較難保證單次提取滿足質(zhì)量要求,望老師知悉理解,并做好組織備份。為保障獲得相對較高質(zhì)量的核酸,請老師務(wù)必按照以下指導(dǎo)原則準備樣本。對于珍貴樣本或微量樣本,建議自行提取
2、組織送樣量要求
注1:未在表格出現(xiàn)的物種,請單獨溝通。送樣量結(jié)果展示為滿足提取一次的量,如樣品經(jīng)過特殊處理或樣本狀態(tài)異常有幾率影響得率,為了保證您的實驗可以順利進行,請酌情增加送樣量
注2:由于骨骼含有大量鈣鹽和礦物質(zhì),細胞密度低,核酸含量較少;毛發(fā)暴露在外界環(huán)境,容易受到紫外線、溫度變化、微生物影響,導(dǎo)致核酸降解,毛干核酸含量低,毛囊周圍細胞多難獲取,為了保證您實驗的順利進行,這兩個部位不建議送組織樣,建議自行提取
物種 | 核酸類型 | 產(chǎn)品類型 | 組織部位(g/ml/個) | |||||||||
心臟 | 肝臟 | 脾臟 | 腎臟 | 腦 | 肌肉 | 腸道 | EDTA抗凝血液 | PAXgene管送樣血液 | 細胞 | |||
人 | DNA | 重測序 | 0.2 | 0.1 | 0.1 | 0.2 | – | 0.2 | 0.2 | 0.3 | – | 1*10e6 |
外顯子 | 0.2 | 0.1 | 0.1 | 0.2 | – | 0.2 | 0.2 | 0.3 | – | 1*10e6 | ||
甲基化 | 0.2 | 0.1 | 0.1 | 0.2 | – | 0.2 | 0.2 | 0.3 | – | 1*10e6 | ||
ONT動植物重測序 | 0.5 | 0.25 | 0.25 | 0.5 | – | 0.2 | 0.2 | 0.5 | – | 5*10e6 | ||
ONT動植物基因組 | 0.5 | 0.25 | 0.25 | 0.5 | – | 0.2 | 0.2 | 0.5 | – | 5*10e6 | ||
PB動植物基因組 | 1 | 0.5 | 0.5 | 1 | – | 0.5 | 0.5 | 1 | – | 5*10e6 | ||
RNA | 全長轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 5*10r6 | |
全長轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 5*10r6 | ||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 3*10r6 | ||
真核小RNA | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 3*10r6 | ||
長鏈非編碼RNA | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 3*10r6 | ||
鼠 | DNA | 重測序 | 0.2 | 0.1 | 0.1 | 0.2 | – | 0.2 | 0.2 | 0.3 | – | 1*10e6 |
外顯子 | 0.2 | 0.1 | 0.1 | 0.2 | – | 0.2 | 0.2 | 0.3 | – | 1*10e6 | ||
甲基化 | 0.2 | 0.1 | 0.1 | 0.2 | – | 0.2 | 0.2 | 0.3 | – | 1*10e6 | ||
ONT動植物重測序 | 0.5 | 0.25 | 0.25 | 0.5 | – | 0.2 | 0.2 | 0.5 | – | 5*10e6 | ||
ONT動植物基因組 | 0.5 | 0.25 | 0.25 | 0.5 | – | 0.2 | 0.2 | 0.5 | – | 5*10e6 | ||
PB動植物基因組 | 1 | 0.5 | 0.5 | 1 | – | 0.5 | 0.5 | 1 | – | 5*10e6 | ||
RNA | 全長轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 5*10r6 | |
全長轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 5*10r6 | ||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 3*10r6 | ||
真核小RNA | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 3*10r6 | ||
長鏈非編碼RNA | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 3*10r6 |
物種 | 核酸類型 | 產(chǎn)品類型 | 送樣量(g) |
皮膚 | DNA | 重測序 | 0.5 |
外顯子 | 0.5 | ||
甲基化 | 0.5 | ||
ONT動植物重測序 | 1 | ||
ONT動植物基因組 | 1 | ||
PB動植物基因組 | 2 | ||
Ultra Long ONT | – | ||
RNA | 全長轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.5 | |
全長轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.5 | ||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.3 | ||
真核小RNA | 0.3 | ||
長鏈非編碼RNA | 0.3 | ||
毛發(fā) | DNA | 重測序 | 0.5 |
外顯子 | 0.5 | ||
甲基化 | 0.5 | ||
ONT動植物重測序 | 1 | ||
ONT動植物基因組 | 1 | ||
PB動植物基因組 | 2 | ||
Ultra Long ONT | – | ||
RNA | 全長轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.5 | |
全長轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.5 | ||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.3 | ||
真核小RNA | 0.3 | ||
長鏈非編碼RNA | 0.3 | ||
骨骼 | DNA | 重測序 | 0.5 |
外顯子 | 0.5 | ||
甲基化 | 0.5 | ||
ONT動植物重測序 | 1 | ||
ONT動植物基因組 | 1 | ||
PB動植物基因組 | 2 | ||
Ultra Long ONT | – | ||
RNA | 全長轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.5 | |
全長轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.5 | ||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.3 | ||
真核小RNA | 0.3 | ||
長鏈非編碼RNA | 0.3 |
3、核酸送樣要求
1)核酸送樣需要提供相關(guān)檢測結(jié)果,DNA類核酸可提供以下檢測手段中的一種或多種檢測結(jié)果: Qubit、 NanoDrop、 AGE,同時請采取適當?shù)募兓椒?,以避免多糖、多酚、蛋白或者核酸酶對DNA樣品的污染,并詳細注明溶解DNA所使用的溶解液類型
2)如果您開展的實驗項目為miRNA的相關(guān)實驗,并且提供的是總RNA的樣本,請務(wù)必確認您采用的總RNA的提取方法保留了小RNA ( 包括miRNA),提取試劑盒型號備注送樣信息單中
3.1二代DNA送樣量要求
產(chǎn)品類型 | SLAF | 重測序 | 甲基化 | 外顯子 | FFPE | PCR產(chǎn)物 | PCR-free | chip-seq |
濃度ng/ul | 5 | 1 | 5 | 6 | 14 | 0.6 | 40 | 1 |
總量ug | 1.5 | 0.1 | 1 | 0.1 | 0.25 | 0.1 | 1 | 0.06 |
體積ul | 15 | 15 | 15 | 15 | 20 | 15 | 15 | 15 |
3.2三代DNA送樣量要求
產(chǎn)品類型 | ONT動植物重測序 | ONT動植物基因組 | PB動植物基因組 | 超長 |
濃度ng/ul | 40 | 100 | 50 | 50 |
總量ug | 4 | 10 | 15 | 15 |
體積ul | 15 | 15 | 15 | 50 |
3.3RNA類送樣量要求
1)針對核酸有雜質(zhì)、污染、粘稠、顏色等情況,需要過柱純化后送樣或者酌情增加送樣量
2)核酸樣品建議使用1.5ml、2ml EP管裝載樣品,其他保存管容易破裂且不利于保存樣品和后續(xù)實驗的開展
3)為了防止樣品污染和混淆,禁止使用96孔板和深孔板裝載樣品
4)用乙醇沉淀的樣品由于運輸中會有少量乙醇揮發(fā),建議將樣品管蓋用封口膜纏繞4-5圈
5)考慮到核酸可能存在含有雜質(zhì)、顏色等物質(zhì)導(dǎo)致會產(chǎn)生大量損失的風險,為保證樣本一次檢測合格并節(jié)約寶貴的重送樣時間,送樣建議量是高于公司判定標準的,請在核酸量足夠的前提下盡量按照送樣建議來送樣。
項目類型 | 初檢結(jié)果(濃度、體積、純度) | 樣品狀態(tài) | ||
濃度(ng/ul) | 總量(ug) | 體積(ul) | ||
全長轉(zhuǎn)錄組(PB) | 100 | 1 | 15 | 正常 |
全長轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 100 | 1 | 15 | 正常 |
二代轉(zhuǎn)錄組 | 20 | 1 | 15 | 正常 |
真核小RNA | 80 | 1 | 15 | 正常 |
長鏈非編碼RNA | 80 | 1 | 15 | 正常 |
4、樣品制備保存指南
4.1常規(guī)動物類樣本
送樣需要選擇新鮮采集的樣本,尤其是Ultra long ONT建庫,樣本的取材優(yōu)先選擇核酸含量相對較高的組織,樣本制備優(yōu)先級:血液>內(nèi)臟>肌肉?;铙w取下新鮮組織(肌肉、肝臟或其他組織,避免用易于寄生微生物的表皮和腸道、可能有變異細胞的病變組織),立即剔除結(jié)締組織和脂肪組織等非研究所需的組織類型。對腫瘤組織的取材,應(yīng)盡可能準確地判定腫瘤和正常組織,腫瘤組織應(yīng)將周圍的正常組織切除干凈(正常組織也應(yīng)將周圍的腫瘤組織切除干凈),腸道組織一定要把內(nèi)容物清洗干凈
4.1.1液氮速凍組織操作流程(所有產(chǎn)品適用)
1)提前準備好冷凍組織的足量液氮,預(yù)裝樣品的凍存管,并在做好標記(盡量不使用漢字命名,命名字符控制在5個以內(nèi))
2)活體取下新鮮的組織
3)迅速用預(yù)冷的PBS溶液(RNase free)或0.9%生理鹽水將組織表面的殘留血液沖洗干凈
4)如果組織體積較大,將組織切成長寬高均≤0.5 mm 的小塊(即黃豆大小)
5)將凍處理好的組織樣本混合均勻后保存于2 mL 或更大體積的螺口凍存管(RNase free)中,標注編號
6)立即(20s內(nèi))置于液氮中冷凍 3~4 h,然后轉(zhuǎn)移至-80 °C長期保存
7)干冰運輸
4.1.2TRIzol保存樣品制備流程(僅RNA細胞和研磨后的組織適用)
1)如果使用 TRIzol裂解液保存送樣,請務(wù)必先進行液氮研磨破碎,樣品量取參考標準送樣量的1/3,然后溶于 TRIzol 中,組織樣品切勿過量
2)震蕩混勻,常溫裂解 5 min 后,使用低溫離心機12000g離心10min,將上清液轉(zhuǎn)至新的2.0ml離心管中(拍質(zhì)控照片,方便核查),轉(zhuǎn)移至-80℃低溫保存,運輸時選擇干冰寄送
3)禁止使用trizol保存組織樣品送樣
4.1.3RNAlater? Tissue Collection保存樣品制備流程(僅RNA適用)
1)用RNAlater? Solution保存組織之前,需要將組織切割成長寬高均≤ 0.5 mm的小塊
2)如果組織帶血液或其他體液,需要過夜后更換一次RNAlater? Solution;不要將剛浸入RNAlater Solution中的樣本立即冷凍,需將樣本置于4 °C 保存過夜(使Solution充分浸潤組織樣本),然后轉(zhuǎn)移至-20 °C 或-80 °C 長期保存
3)RNAlater? Solution 不會影響組織結(jié)構(gòu),可以把已保存的組織從 RNAlater? Solution中取出,切下實驗所需的用量,把剩余的組織再放入到原來的保存液中繼續(xù)保存
4)保存于RNAlater? Solution中樣本,-20 °C 存放時,樣本不會結(jié)凍,但可能會有晶體析出,這并不影響后續(xù)的 RNA 提取工作;-80 °C 存放時,樣本會結(jié)凍, 在進行 RNA 提取前,需置于冰上融化再進行后續(xù)操作,解凍后的樣本可再次放入-80 °C 保存
5)一般來講,生物樣本保存于RNAlater? Solution中,37 °C可存放1天,25 °C(室溫)可存放1周,4 °C 可存放1個月,-20 °C 或-80 °C 可長期保存。但鑒于生物樣本的特殊性及實驗可重復(fù)性,建議所有保存于RNAlater? Solution中樣本,都要置于-20 °C 或-80 °C 長期保存
注:如果組織較小,建議優(yōu)先選擇此方式送樣
4.2全血
DNA類產(chǎn)品推薦使用EDTA抗凝管采集后分裝,RNA類產(chǎn)品優(yōu)先推薦使用PAXgene血液RNA管采集。血樣建議為新鮮采集,不建議保存時間過長。血液相關(guān)產(chǎn)品僅接收全血或分離的細胞樣本,不接收血清、血漿。
4.2.1DNA常規(guī)產(chǎn)品制備操作流程
1)用醫(yī)用抗凝管或已裝有抗凝劑(選用檸檬酸鈉或 EDTA 抗凝劑,由于會影響實驗所以不可用肝素)的旋蓋管收集全血樣本
2)上下輕輕顛倒混勻十次后,分裝到常規(guī)EP管中(體積不要超過EP管的一半),轉(zhuǎn)移至-20或-80 °C長期保存(實際根據(jù)采血管的說明要求操作)
3)干冰運輸
注1:血液采集管請盡量不要用需專門對應(yīng)提取試劑盒的采血管,以防送樣后我們因無對應(yīng)試劑盒影響提取時間(盡量送樣前溝通)
注2:采集完血液之后需將血液轉(zhuǎn)移至EP管中,玻璃材質(zhì)采血管冷凍之后易碎
4.2.2Ultra Long ONT樣本制備流程
4.2.2.1新鮮血液
1)采集血液( 5- 10mL),然后加入含 EDTA 抗凝管中(不可使用肝素 、檸檬酸鈉等抗凝管,建議使用 Cell-Free 采血管,做好標記(樣本名稱,日期,體積)
2)輕輕顛倒混勻十次,室溫正立放置
3)冰袋(4 °C )運輸需避開節(jié)假日(注意冰袋盡可能多放,樣本置于中間,保證箱體溫度維持在 4 °C)。從血液離體算起,運輸至實驗人員手中不可超過 3 天
4.2.2.2凍存血液
1)血液用抗凝管采集后輕輕顛倒混勻十次
2)哺乳動物血液分裝到 2ml 離心管里,1ml/管(至少2管,若血量不足,可根據(jù)實際情況送樣)
3)魚類、禽類、兩棲類全血分裝到 1.5ml 離心管里, 100ul/管(至少5管,若血量不足,可根據(jù)實際情況送樣)
4)做好標記(樣本名稱, 日期,體積),液氮速凍,干冰寄送
4.2.3RNA產(chǎn)品制備操作流程
4.2.3.1PAXgene血液RNA管制備流程(人和靈長類動物優(yōu)先選擇該方式送樣)
1)PAXgene管的介紹
在研究細胞內(nèi) RNA 使用的許多分子測試中,采集全血是第一步。 這類測試中的最大挑戰(zhàn)是細胞內(nèi) RNA不穩(wěn)定,在采血后幾小時內(nèi)迅速降解。 此外,通過基因誘導(dǎo)過程,某些種類的 RNA 采血后在體外增加。 體外 RNA 降解和基因誘導(dǎo)均會導(dǎo)致體內(nèi)基因轉(zhuǎn)錄物相對數(shù)量估計過低或過高。 PAXgene 血液RNA 管含有一種附加劑,通過減少體外 RNA 降解和盡量減少基因誘導(dǎo),可穩(wěn)定體內(nèi)基因轉(zhuǎn)錄譜。 與PAXgene 血液 RNA 套件配套使用時,PAXgene 血液 RNA 管可以實現(xiàn)準確的基因轉(zhuǎn)錄物檢測和定量
2)采集前準備
A.PAXgene Blood RNA Tube(2.5mL采血管,含專用RNA穩(wěn)定劑)
B.符合標準的靜脈采血裝置(無菌針頭、持針器、止血帶等)
C.毒用品(酒精棉片、碘伏等)
D.生物安全防護裝備(手套、護目鏡等)
3)采集流程
A.確保 PAXgene 血液 RNA 管使用前在 18-25?C 溫度下,且正確貼有標本識別標簽
B.如果 PAXgene 血液 RNA 管是待抽吸的唯一試管,應(yīng)當先抽血至“丟棄管”,再抽血至 PAXgene 血液 RNA 管,這樣便可以灌注放血過程中使用的采血裝置的內(nèi)部空間。 否則,PAXgene 血液 RNA 管應(yīng)是放血程序中最后抽吸的試管
C.采用您所在機構(gòu)推薦的標準靜脈穿刺技術(shù)程序,使用采血裝置和試管固定器,采血2.5ml至 PAXgene 血液RNA 管
D.采血后立即輕輕地將PAXgene 血液 RNA 管倒置 8–10 次
E.在室溫下 (18–25?C) 直立存儲 PAXgene 血液 RNA 管至少 2 小時,最多 72 小時,然后再處理或轉(zhuǎn)移至冷藏室 (2–8?C) 或冷凍室 (-20?C)。 若需要 -70?C / -80?C 的存儲溫度,請參見“PAXgene 血液RNA 管內(nèi)所采集標本的冷凍和解凍程序” 以獲取詳細信息
4)注意事項
A.確保采血管在有效期內(nèi),無漏液或變色(正常試劑為淡黃色)
B.不可預(yù)先打開管蓋,避免穩(wěn)定劑失效
C.一旦受到碰撞,冷凍的 PAXgene 血液 RNA 管就容易破裂。為降低在運輸期間破裂的風險,請按照處理玻璃管的方式來處理冷凍的試管。使用者必須確認自己的 PAXgene 血液 RNA 管冷凍和運輸協(xié)議
D.PAXgene 血液 RNA 管填充不足會導(dǎo)致血液與附加劑的比率錯誤,且可能導(dǎo)致分析結(jié)果錯誤或產(chǎn)品性能欠佳
E.PAXgene血液 RNA 系統(tǒng)不適用于采集和純化病毒 RNA
4.2.3.2EDTA抗凝管送樣制備流程
1)用醫(yī)用抗凝管或已裝有抗凝劑(選用檸檬酸鈉或 EDTA 抗凝劑,由于會影響實驗所以不可用肝素)的旋蓋管收集全血樣本
2)上下輕輕顛倒混勻十次后,分裝到常規(guī)EP管中(體積不要超過EP管的一半),轉(zhuǎn)移至-20或-80 °C長期保存(實際根據(jù)采血管的說明要求操作)
3)干冰運輸
4.3細胞
4.3.1貼壁細胞
4.3.1.1液氮速凍法
1)確定細胞生長狀態(tài)良好;離心得到細胞沉淀(依據(jù)客戶實驗室細胞離心步驟,注意細胞離心要適度,不要使細胞離心過實而造成裂解液不能充分滲透,4度離心機,轉(zhuǎn)速800g為宜)
2)棄去培養(yǎng)基,加入 1 mlLPBS(RNase free,室溫),輕輕將細胞沉淀懸起, 轉(zhuǎn)移至 2 mL 旋蓋尖底離心管(RNase free)中
3)離心(依據(jù)客戶實驗室細胞離心步驟,注意細胞離心要適度,不要使細胞離心過實而造成裂解液不能充分滲透,4度離心機,轉(zhuǎn)速800g為宜)得到細胞沉淀,棄去PBS,液氮速凍2h之后轉(zhuǎn)移至-80℃低溫保存,送樣時選擇干冰運輸寄送
4.3.1.2TRIzol裂解法
1)離心收集的細胞迅速溶于 TRIzol 裂解,每 5 X 10^6個細胞加 1 mL TRIzol
2)細胞溶于 TRIzol 后,如出現(xiàn)成團,需用吸頭將細胞團吹打散,或者激烈震蕩混勻,使細胞完全溶于 TRIzol 中充分裂解
3)室溫靜置5min,之后轉(zhuǎn)移至-80℃低溫保存,送樣時選擇干冰運輸寄送
注:判斷裂解液加入量是否合適的標準可以根據(jù)細胞溶解物的黏度來判斷。在細胞剛?cè)芙鈺r,可以發(fā)現(xiàn)有絲狀物出現(xiàn),若裂解液加入量合適,吹打幾次后,絲狀物會消失,液體黏稠性下降;若裂解液的量過少,絲狀物往往一直存在,液體黏稠性大,應(yīng)繼續(xù)補加裂解液。裂解液加入量過少,會導(dǎo)致抽提的 RNA 降解
4.3.2懸浮細胞
4.3.2.1液氮速凍法
1)確定細胞生長狀態(tài)良好;離心得到細胞沉淀(依據(jù)客戶實驗室細胞離心步驟,注意細胞離心要適度,不要使細胞離心過實而造成裂解液不能充分滲透,4度離心機,轉(zhuǎn)速800g為宜)
2)棄去培養(yǎng)基,加入 1 mlLPBS(RNase free,室溫),輕輕將細胞沉淀懸起, 轉(zhuǎn)移至 2 mL 旋蓋尖底離心管(RNase free)中
3)離心(依據(jù)客戶實驗室細胞離心步驟,注意細胞離心要適度,不要使細胞離心過實而造成裂解液不能充分滲透,4度離心機,轉(zhuǎn)速800g為宜)得到細胞沉淀,棄去PBS,液氮速凍2h之后轉(zhuǎn)移至-80℃低溫保存,送樣時選擇干冰運輸寄送
4.3.2.2TRIzol裂解法
1)離心收集的細胞迅速溶于 TRIzol 裂解,每 5 X 10^6個細胞加 1 mL TRIzol
2)細胞溶于 TRIzol 后,如出現(xiàn)成團,需用吸頭將細胞團吹打散,或者激烈震蕩混勻,使細胞完全溶于 TRIzol 中充分裂解
3)室溫靜置5min,之后轉(zhuǎn)移至-80℃低溫保存,送樣時選擇干冰運輸寄送
5、注意事項
核酸提取質(zhì)量與物種及組織部位、采集方法及保存狀態(tài)、提取方法及操作、實驗器材及環(huán)境等因素均有密不可分的聯(lián)系,尤其是三代超長提取對樣本的質(zhì)量、總量要求更高,望知悉及理解,并做好樣本備份。為了保障獲得高質(zhì)量的核酸,請務(wù)必按照送樣手冊所規(guī)定的準備樣本。對珍貴樣本或者微量樣本,建議自行提取
1)組織速凍時間:組織離體后,胞內(nèi)核酸便開始降解,尤其是 RNA,故采集時,目的組織離體后,需立即速凍,建議 3min 內(nèi)完成,越快越好。速凍時間過短會導(dǎo)致速凍不徹底,核酸有降解風險
2)組織送樣量:建議送樣量適用于 95%的物種組織,少部分組織因胞內(nèi)核酸量較低,需適當增加送樣量,比如動物皮膚、毛發(fā)等。請嚴格按照上方組織送樣量要求送樣,送樣量過少或過多均不利于提取實驗。采樣量較少會導(dǎo)致提取的核酸總量、濃度不合格,采樣量過多反而會造成速凍不徹底、提取取樣困難、凍融降解等危險
3)組織狀態(tài):不建議送組織狀態(tài)差或非生長旺盛期樣品,核酸有一定幾率降解
4)組織保存管的選擇:所有組織樣品務(wù)必使用離心管或螺紋管保存,切勿直接裝入密封袋(低溫凍脆易破裂,導(dǎo)致樣品泄露,交叉污染)保存
5)組織樣品保存方法選擇:首選液氮速凍;沒有液氮條件的,可直接放入-80℃冰箱凍存。未使用液氮速凍或液氮速凍時間過短都有一定幾率導(dǎo)致核酸降解
6)組織送樣方式的選擇:干冰運輸,且需要保證干冰的充足,冰袋和常溫送樣,有幾率導(dǎo)致核酸的降解。除RNA類樣品可使用RNAlater保存送樣,其余產(chǎn)品均建議送速凍組織,不建議使用保護液送樣,化開離心會有幾率導(dǎo)致核酸降解;不建議酒精送樣,固定不徹底,有一定幾率殘留核酸酶,降解核酸
7)凍融組織: 組織凍存后,一旦凍融,核酸降解概率大于 80%,幾乎不可能提取成功,此類組織不建議送樣。請各位老師送樣前注意組織保存狀態(tài), 確保組織未發(fā)生過凍融情況
8)帶血組織:由于血液沒有專業(yè)的保護劑,去除不凈一起速凍送樣會影響組織的完整性
9)長年保存的組織:保存時間超過一年的組織不建議送樣
10)組織分離要求:正常組織樣本中不能含有病變組織,而病變組織樣本中也不可以夾帶有正常組織,提取實驗時無法精確取樣,無法稱重。組織量過多的不能全部取樣,只隨機選取適量組織提取
11)對于同一個組織樣品需要同時提取 DNA和 RNA 的,請務(wù)必分成兩管分批次送樣。樣本的特殊處理包括:鹽處理、溫度處理、藥物處理、病毒侵染、傷害處理、干旱處理等脅迫處理方式,不同程度的處理對樣本的核酸質(zhì)量會造成不同程度的影響,常見的會導(dǎo)致核酸 的降解或者得率降低。因此,經(jīng)過特殊處理的樣本,在送樣時,務(wù)必請在樣本信息單中進行詳細的備注,以便盡量提高提取的成功率和避免樣本的浪費
6、不合格樣品存在風險
6.1樣本總量不足、濃度過低存在風險
1)文庫構(gòu)建失敗
2)文庫產(chǎn)量低不能上機測序或測序數(shù)據(jù)量不足
3)導(dǎo)致數(shù)據(jù)隨機性異常
4)數(shù)據(jù)質(zhì)量差
6.2降解樣本風險
1)文庫構(gòu)建失敗
2)文庫產(chǎn)量低不能上機測序或測序數(shù)據(jù)量不足
3)導(dǎo)致數(shù)據(jù)隨機性異常
4)數(shù)據(jù)質(zhì)量差
5)導(dǎo)致數(shù)據(jù)duplication比例高、隨機性差
6)導(dǎo)致Small RNA rRNA比例高,影響有效數(shù)據(jù),文庫片段異常
6.3蛋白或其他雜質(zhì)污染
1)可能影響Small RNA電泳分離,造成切膠不準,影響問題質(zhì)量
2)可能影響RNA-seq磁珠分離導(dǎo)致建庫失敗,或即使達到上機要求也可能導(dǎo)致文庫隨機性差等問題
3)文庫構(gòu)建失敗
4)文庫產(chǎn)量低不能上機測序或測序數(shù)據(jù)量不足
6.4目標RNA含量低
1)總RNA達到要求,但由于樣本特異性,small RNA含量低于正常樣本,導(dǎo)致建庫失敗
2)總RNA達到要求,但由于處理或組織部位的特異性,mRNA降解或含量低,導(dǎo)致建庫失敗或者測序數(shù)據(jù)中rRNA 數(shù)據(jù)比例高